Il corso prevede l’apprendimento e l’applicazione di tecniche di laboratorio di biologia applicata tra cui basi della microscopia ottica e a fluorescenza, tecniche elettroforetiche, PCR qualitativa e quantitativa, citofluorimetria e sue applicazioni. Il corso si svolgerà con lezioni frontali in aula, ed esercitazioni pratiche in laboratorio durante le quali gli studenti impareranno ad eseguire brevi esperimenti, a raccogliere dati, elaborare risultati sperimentali e a presentare i risultati ottenuti.
Modulo e/o Codocenza | Docente | CFU |
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Metodologie di Biologia Applicata (Materia a Scelta) | Stefania Bulotta | 1 |
Metodologie di Biologia Applicata (Materia a Scelta) | Anna Martina Battaglia | 1 |
Scuola di Farmacia e Nutraceutica - Data stampa: 15/01/2025
L'insegnamento si propone di fornire agli studenti le nozioni relative alle principali tecniche di base della biologia applicata. Al termine del corso lo studente avrà acquisito le conoscenze teoriche e pratiche sulle principali metodologie utilizzate in un laboratorio di biologia cellulare (microscopia, analisi elettroforetiche, analisi citofluorimetriche).
INTRODUZIONE AL LABORATORIO DI BIOLOGIA. Norme di comportamento e sicurezza, precauzioni antinfortunistiche nella manipolazione di sostanze comuni in un laboratorio di biologia, dispositivi per la protezione individuale (DPI), utilizzo di vetreria, pipette e micropipette, strumentazione e materiale di uso comune in un laboratorio di biologia.
TECNICHE DI MICROSCOPIA OTTICA E A FLUORESCENZA. Microscopio ottico e a fluorescenza, microscopio confocale, elettronico, a trasmissione e a scansione. Utilizzo dei fissativi e preparazione di campioni istologici e cellulari per la microscopia ottica. Reazioni istochimiche e immunoistochimiche su cellule fissate e trattamenti per la visualizzazione dei componenti cellulari.
TECNICHE ELETTROFORETICHE. Principi dell’elettroforesi ed applicazioni di tecniche elettroforetiche per la separazione, visualizzazione e purificazione di molecole di interesse biologico. L’elettroforesi delle proteine: SDS-PAGE.
ANALISI E MANIPOLAZIONE DEL DNA. Reazione a catena della polimerasi (PCR).
TECNICHE CITOFLUORIMETRICHE. Il citofluorimetro e sue applicazioni.
Il tempo richiesto per lo studio individuale del programma è di circa 34 ore.
Lezioni frontali, lettura di articoli scientifici originali e discussione in aula; esercitazioni di laboratorio correlate agli argomenti del corso: 16 ore.
Libri di testo consigliati:
Maccarrone Mauro: Metodologie biochimiche e biomolecolari, Zanichelli.
Incontri con i docenti durante l’orario di ricevimento, su richiesta degli studenti.
Frequenza obbligatoria.
Le modalità generali sono indicate nel regolamento didattico di Ateneo all’art.22 consultabile al link http://www.unicz.it/pdf/regolamento_didattico_ateneo_dr681.pdf
L’esame finale sarà svolto in forma scritta. La prova scritta consiste in 20 quiz a risposta multipla, riguardanti gli argomenti svolti a lezione e durante le attività di laboratorio, con punteggio 1.5 per ogni risposta corretta e nessuna penalizzazione per ogni risposta errata. L’esame risulta superato se si risponde correttamente a 12 domande.
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Conoscenza e comprensione argomento |
Capacità di analisi e sintesi |
Utilizzo di referenze |
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Non idoneo |
Importanti carenze. Significative inaccuratezze |
Irrilevanti. Frequenti generalizzazioni. Incapacità di sintesi |
Completamente inappropriato |
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Idoneo |
Conoscenza routinaria |
E’ in grado di analisi e sintesi corrette. Argomenta in modo logico e coerente |
Utilizza le referenze standard |